特定種類微生物檢測(cè),首發(fā)于微基生物。
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關(guān)于特定種類的微生物,客戶可告知物種信息及引物信息,微基生物針對(duì)目標(biāo)微生物進(jìn)行qPCR定量分析;也可告知感興趣的物種名稱,微基生物來查詢相關(guān)引物信息;如老師感興趣的物種信息尚未見文獻(xiàn)報(bào)道,微基生物可以開發(fā)程序,自行研發(fā)尋找目標(biāo)菌株的特異基因并設(shè)計(jì)目標(biāo)菌株的特異引物,驗(yàn)證引物的特異性,進(jìn)行后繼實(shí)驗(yàn)。
微基生物已檢測(cè)過的物種信息,見表格(僅列出了常見的部分微生物種類),其他的微生物也可以檢測(cè)。
| 級(jí)別 | 中文名稱 | 英文名稱 |
| 界 | 細(xì)菌 | Bacteria |
| 界 | 真菌 | Fungi |
| 界 | 古菌 | Archaea |
| 門 | 放線菌門 | Actinobacteria |
| 門 | 擬桿菌門 | Bacteroidetes |
| 門 | 厚壁菌門 | Firmicutes |
| 綱 | alpha變形菌綱 | Alpha-proteobacteria |
| 綱 | gamma變形菌綱 | Gamma-proteobacteria |
| 科 | 腸桿菌科 | Enterobacteriaceae |
| 科 | 瘤胃球菌科 | Ruminococcaceae |
| 屬 | 雙歧桿菌屬 | Bifidobacterium |
| 屬 | 大腸桿菌屬 | Escherichia |
| 屬 | 乳酸桿菌屬 | Lactobacillus |
| 屬 | 梭菌屬 | Clostridium |
| 屬 | 腸球菌屬 | Enterococcus |
| 屬 | 擬桿菌屬 | Bacteroides |
| 屬 | 奇異菌屬 | Atopobium cluster |
| 屬 | 鏈球菌屬 | Streptococcus |
| 屬 | 瘤胃球菌屬 | Ruminococcus |
| 屬 | 糞桿菌屬 | Faecalibacterium |
| 屬 | 布勞特菌屬 | Blautia |
| 屬 | 艱難梭菌屬 | Clostridium difficile |
| 屬 | 脫硫弧菌屬 | Desulfovibrio |
| 屬 | 另支菌屬 | Alistipes |
| 屬 | 鏈球菌屬 | Streptococcus |
| 屬 | 薩特氏菌屬 | Sutterella |
| 屬 | 丙酸桿菌屬 | Propionibacterium |
| 屬 | 假單胞菌屬 | Pseudomonas |
| 屬 | 噬酸菌屬 | Acidovorax |
| 屬 | 不動(dòng)桿菌屬 | Acinetobacter |
| 屬 | 鞘氨醇單胞菌屬 | Sphingomonas |
| 屬 | 分枝桿菌屬 | Mycobacterium |
| 屬 | 普氏菌屬 | Prevotella |
| 種 | 溶纖維丁酸弧菌 | Butyrivibrio fibrisolvens |
| 種 | 蛋白溶解梭菌 | Clostridium proteoclasticum |
| 種 | 金黃色葡萄球菌 | Staphylococcus aureus |
| 種 | 青春雙歧桿菌 | Bifidobacterium adolescentis |
| 種 | 鼠李糖乳桿菌 | Lactobacillus rhamnosus |
| 種 | 糞腸球菌 | Enterococcus faecalis |
| 種 | 呀卟啉單胞菌 | Porphyromonas gingivalis |
| 種 | 陰道加德納菌 | Gardnerella vaginalis |
| 種 | 鼠乳桿菌 | Lactobacillus murinus |
| 種 | 解淀粉芽孢桿菌 | Bacillus amyloliquefaciens |
| 種 | 芽孢桿菌 | Bacillus velezensis |
| 種 | Akkermansia muciniphila | |
| 種 | 釀酒酵母 | Saccharomyces cerevisiae |
| 株 | 唾液鏈球菌 K12 | Saliva streptococcs |
2 qPCR的原理
實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)(Real-timeQuantitativePCR,qPCR)是指在PCR反應(yīng)體系中加入可與DNA產(chǎn)物特異性結(jié)合的熒光基團(tuán),利用熒光信號(hào)積累實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)整個(gè)PCR進(jìn)程,最終通過相對(duì)定量(與內(nèi)參基因?qū)Ρ龋┗蚪^對(duì)定量(通過標(biāo)準(zhǔn)曲線對(duì)未知模板進(jìn)行定量)的方法確定各個(gè)樣本的本底表達(dá)量。
3 3種熒光試劑的工作原理及區(qū)別
SYBRGreenⅠ法:
嵌入到雙鏈DNA分子后在PCR反應(yīng)體系中,加入過量SYBR熒光染料,SYBR熒光染料特異性地?fù)饺隓NA雙鏈后構(gòu)象發(fā)生變化,能夠吸收497nm的激發(fā)光并發(fā)出520nm的熒光;而不摻入DNA雙鏈中的染料分子不會(huì)發(fā)射任何熒光信號(hào),從而保證熒光信號(hào)的增加與PCR產(chǎn)物的增加完全同步。
TaqMan探針法:
擴(kuò)增時(shí)加入一個(gè)特異性的寡核苷酸熒光探針,兩端分別標(biāo)記一個(gè)報(bào)告熒光基團(tuán)和一個(gè)淬滅熒光基團(tuán)。探針完整時(shí),報(bào)告基團(tuán)發(fā)射的熒光信號(hào)被淬滅基團(tuán)吸收;PCR擴(kuò)增時(shí),Taq酶的5′-3’外切酶活性將探針酶切降解,使報(bào)告熒光基團(tuán)和淬滅熒光基團(tuán)分離,從而熒光監(jiān)測(cè)系統(tǒng)可接收到熒光信號(hào),即每擴(kuò)增一條DNA鏈,就有一個(gè)熒光分子形成,實(shí)現(xiàn)了熒光信號(hào)的累積與PCR產(chǎn)物形成完全同步
SYBRGREEN法和TaqMan探針法的區(qū)別
| 方法 | 優(yōu)點(diǎn) | 缺點(diǎn) |
|
SYBR GREEN法 |
高靈敏度,操作簡(jiǎn)單,不影響酶促反應(yīng),價(jià)格便宜 |
1與探針法相比,對(duì)引物特異性要求較高,需進(jìn)行熔解曲線分析 2靈敏度相對(duì)較低。 |
|
TaqMan 探針法 |
1具有高度特異性 2更高的靈敏度 3可同時(shí)檢測(cè)幾種不同的熒光信號(hào)的產(chǎn)物 |
1探針價(jià)格較高 2需要不同引物的擴(kuò)增效率一致,對(duì)引物的設(shè)計(jì)及擴(kuò)增條件要求比較高 |
4 qPCR的實(shí)驗(yàn)方法
| 實(shí)驗(yàn)方法 | 原理 | 技術(shù)應(yīng)用 | 相關(guān)應(yīng)用 |
| 絕對(duì)定量(AbsoluteQuantification,AQ) | 是測(cè)定目的基因在樣本中的分子數(shù)目,通過構(gòu)建標(biāo)準(zhǔn)曲線對(duì)未知模板進(jìn)行分子數(shù)目的定量,即通常所說的拷貝數(shù)。 |
特定微生物的拷貝數(shù)檢測(cè) 特定功能基因的拷貝數(shù)檢測(cè) 特定抗性基因的拷貝數(shù)檢測(cè) |
1臨床疾病診斷 2動(dòng)物疾病檢測(cè) 3食品安全 4科學(xué)研究 5應(yīng)用行業(yè):各級(jí)各類醫(yī)療機(jī)構(gòu)、大學(xué)及研究所、CDC、檢驗(yàn)檢疫局、獸醫(yī)站、食品企業(yè)及乳品廠等。 |
| 相對(duì)定量(RelativeQuantification,RQ) | 測(cè)定目的基因在樣本中的含量的相對(duì)比例,而不需要知道它們?cè)诿總€(gè)樣本中的絕對(duì)拷貝數(shù),一般是通過CT值之差來計(jì)算。 |
樣本中某種特定微生物拷貝數(shù)占全部微生物拷貝數(shù)的比例 某種功能基因的微生物拷貝數(shù)占全部微生物拷貝數(shù)的比例 某種抗性基因拷貝數(shù)占全部微生物拷貝數(shù)的比例 |
|
相對(duì)定量和絕對(duì)定量的數(shù)據(jù)計(jì)算方法
標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)??截悢?shù)計(jì)算:
每微升拷貝數(shù)(copies/μl)=[質(zhì)粒濃度(ng/ul)×10-9×6.02×1023]/克隆產(chǎn)物相對(duì)分子質(zhì)量
原始樣本目標(biāo)基因拷貝數(shù)copies/μLDNA=拷貝數(shù)*稀釋倍數(shù)
原始樣本目標(biāo)基因拷貝數(shù)copies/g樣本=(原始樣本目標(biāo)基因拷貝數(shù)copies/μLDNA*基因組DNA體積)/樣本抽提重量,(如果客戶樣本為DNA樣本,則不需要計(jì)算copies/g樣本)
相對(duì)定量的計(jì)算:
步驟1:內(nèi)參基因均一化樣本差異:Ct目的基因–Ct內(nèi)參基因=△Ct
步驟2:其他樣本和對(duì)照樣本比較:△Ct處理樣本–△Ct對(duì)照樣本=△△Ct
步驟3:使用公式計(jì)算:倍數(shù)變化=2-△△Ct
5 qPCR的實(shí)驗(yàn)流程
6 qPCR檢測(cè)送樣要求
| 樣本類型 | 樣品量/例 | 備注 | |
| 環(huán)境 | 土壤/沉積物/淤泥 | 1g | |
| 湖水/海水/河水 | 1L,用濾膜或離心富集 | 過 0.22μm 的濾膜,或者 12000rpm 離心,進(jìn)行富集。 | |
| 污水 | 20ml | 若樣本清亮則可適當(dāng)?shù)囟嗳 ? | |
| 泥水混合樣 | 2ml | ||
| 空氣 | 根據(jù)實(shí)驗(yàn)需要,用無菌濾膜過濾空氣。 | ||
| 發(fā)酵物 | 固體 2g,液體 20ml |
| 樣本類型 | 樣品量/例 | 備注 | |
| 人體 | 糞便 | ≥3g | |
| 皮膚 | 5 個(gè)采集拭子 | 采集 5cm*5cm 面積,反復(fù)刮取 20 次。 | |
| 生殖道 | 5 個(gè)采集拭子 | 采集陰道口內(nèi) 4cm 處分泌物, 每個(gè)拭子轉(zhuǎn) 3 圈。 | |
| 牙菌斑/舌苔 | 5 個(gè)采集拭子 | 在采集的部位,刮取 10 次左右。 | |
| 唾液 | 10ml | ||
| 痰液 | 10ml 或 2-3 口痰液 | ||
| 鼻腔 | 5 個(gè)采集拭子 | 采集鼻腔內(nèi)粘膜上的分泌物,轉(zhuǎn) 3 圈。 | |
| 肺部灌洗液 | 30ml 富集液 | 對(duì)灌洗液進(jìn)行離心富集。 | |
| 腸道/胃組織 |
5mm*5mm*3mm 3 塊 |
盡量多一取些。 | |
| 血液 | 3ml 全血 | 用 EDTA 抗凝管,顛倒 8-10 次。 不建議用肝素。 | |
| 尿液 | 30mL 尿液 | 取中段尿?yàn)橐恕?/span> | |
| 母乳 | 5mL | ||
| 動(dòng)物 | 糞便 | ≥3g | 最少 0.05g。 |
|
盲腸/結(jié)腸/胃 組織 |
≥3g | 至少 1g,如果實(shí)驗(yàn)條件允許,盡可能多的收集樣本 | |
| 腸道內(nèi)容物 | ≥3g | 最少 0.05g。建議客戶自己取內(nèi)容物,可以用 PBS 沖洗。 |
提醒
1 因?yàn)閝PCR絕對(duì)定量最終得到的是單位重量,或是單位體積目標(biāo)基因的拷貝數(shù),所以如果客戶送DNA,建議客戶記錄抽提DNA時(shí)樣本的使用重量或是體積,方便后繼對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行轉(zhuǎn)化。
2 送樣時(shí)請(qǐng)盡量使用冰盒(泡沫盒+干冰),以保證運(yùn)輸過程中的低溫條件(干冰的揮發(fā)消耗量約為 3-4 公斤/天)。在打包時(shí)放入足量的干冰, 將樣本埋入干冰中, 為了保持冰盒中的低溫環(huán)境,建議采用加厚的泡沫盒
7 qPCR結(jié)果
標(biāo)準(zhǔn)曲線
擴(kuò)增曲線
熔解曲線
定量結(jié)果
| 微基編號(hào) | 拷貝數(shù) | 樣本稀釋倍數(shù) | 抽提樣本重量(g) | 基因組DNA體積(μL) | 原始樣本目標(biāo)基因拷貝數(shù)copies/μL DNA | 原始樣本目標(biāo)基因平均拷貝數(shù)copies/μL DNA | 原始樣本目標(biāo)基因拷貝數(shù)copies/g樣本 | 原始樣本目標(biāo)基因平均拷貝數(shù)copies/g樣本 |
| 1 | 1.08E+06 | 200 | 0.237 | 50 | 2.17E+08 | 2.26E+08 | 4.58E+10 | 4.76E+10 |
| 1 | 1.23E+06 | 200 | 0.237 | 50 | 2.47E+08 | 5.20E+10 | ||
| 1 | 1.07E+06 | 200 | 0.237 | 50 | 2.14E+08 | 4.51E+10 | ||
| 2 | 7.28E+05 | 200 | 0.24 | 50 | 1.46E+08 | 1.49E+08 | 3.03E+10 | 3.09E+10 |
| 2 | 7.55E+05 | 200 | 0.24 | 50 | 1.51E+08 | 3.15E+10 | ||
| 2 | 7.44E+05 | 200 | 0.24 | 50 | 1.49E+08 | 3.10E+10 | ||
| 3 | 1.24E+06 | 200 | 0.25 | 50 | 2.48E+08 | 2.59E+08 | 4.96E+10 | 5.19E+10 |
| 3 | 1.35E+06 | 200 | 0.25 | 50 | 2.69E+08 | 5.39E+10 | ||
| 3 | 1.30E+06 | 200 | 0.25 | 50 | 2.61E+08 | 5.21E+10 | ||
| 4 | 1.61E+06 | 200 | 0.234 | 50 | 3.21E+08 | 3.22E+08 | 6.87E+10 | 6.87E+10 |
| 4 | 1.60E+06 | 200 | 0.234 | 50 | 3.19E+08 | 6.82E+10 | ||
| 4 | 1.62E+06 | 200 | 0.234 | 50 | 3.24E+08 | 6.93E+10 | ||
| 5 | 1.27E+05 | 200 | 0.175 | 50 | 2.54E+07 | 2.66E+07 | 7.25E+09 | 7.59E+09 |
| 5 | 1.33E+05 | 200 | 0.175 | 50 | 2.66E+07 | 7.61E+09 | ||
| 5 | 1.39E+05 | 200 | 0.175 | 50 | 2.77E+07 | 7.91E+09 |
8 術(shù)語解釋
Ct值(Cyclethreshold,循環(huán)閾值):每個(gè)反應(yīng)管內(nèi)的熒光信號(hào)到達(dá)設(shè)定閾值時(shí)所經(jīng)歷的循環(huán)數(shù)。
熒光閾值(threshold)的設(shè)定:PCR反應(yīng)的前15個(gè)循環(huán)的熒光信號(hào)作為熒光本底信號(hào),熒光閾值的缺?。J(rèn))設(shè)置是3-15個(gè)循環(huán)的熒光信號(hào)的標(biāo)準(zhǔn)偏差的10倍,即:threshold=10*SDcycle3-15
基線(baseline):在PCR擴(kuò)增反應(yīng)的最初數(shù)個(gè)循環(huán)里,熒光信號(hào)變化不大,接近一條直線,即稱為基線。
熔解曲線Tm(TmOfMeltingCurve):SYBRGreen染料發(fā)實(shí)驗(yàn)結(jié)束后需對(duì)qPCR產(chǎn)物加熱,隨著溫度的升高,雙鏈接擴(kuò)增產(chǎn)物逐漸解鏈,導(dǎo)致熒光強(qiáng)度下降,到達(dá)某一溫度時(shí),會(huì)導(dǎo)致大量的產(chǎn)物解鏈,熒光急劇下降,將此溫度稱為Tm值。不同PCR產(chǎn)物Tm值不同,從而可對(duì)PCR的特異性進(jìn)行鑒定。
9 參考文獻(xiàn)
1 Tristano Bacchetti De Gregoris et.al. Improvement of phylum- and class-specific primers for real-time PCR quantification of bacterial taxa.2011. Journal of Microbiological Methods.(厚壁菌門擬桿菌門alpha變形菌gamma變形菌等)
2 Baskar Balakrishnan et.al. Development of a real-time PCR method for quantification of Prevotella histicola from the gut.2017.Anaerobe.(普氏菌)
3 John Penders et.al. Quantification of Bifidobacterium spp., Escherichia coli and Clostridium difficile in faecal samples of breast-fed and formula-fed infants by real-time PCR.2005. FEMS Microbiology Letters.(雙歧桿菌艱難梭菌大腸桿菌探針法)
4 Anders Bergstrom et.al. Introducing GUt Low-Density Array (GULDA) – a validated approach for qPCR-based intestinal microbial community analysis.2012. FEMS Microbiology Letters.(多種菌的定量)
特定種類微生物檢測(cè),首發(fā)于微基生物。
]]>抗性基因檢測(cè),首發(fā)于微基生物。
]]>1 檢測(cè)樣本
糞便、水樣、土壤、霧霾、細(xì)菌等
若客戶提供DNA,建議客戶記錄抽提DNA時(shí)樣本的使用重量或是體積,方便后繼對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行轉(zhuǎn)化。
2 檢測(cè)平臺(tái)
qPCR定量檢測(cè)平臺(tái),能夠檢測(cè)300多種抗生素抗性基因。
3 檢測(cè)服務(wù)
絕對(duì)定量檢測(cè)服務(wù):
是測(cè)定目的基因在樣本中的分子數(shù)目,通過構(gòu)建標(biāo)準(zhǔn)曲線對(duì)未知模板進(jìn)行分子數(shù)目的定量,即通常所說的拷貝數(shù)。
相對(duì)定量檢測(cè):
測(cè)定目的基因在樣本中的含量的相對(duì)比例,而不需要知道它們?cè)诿總€(gè)樣本中的絕對(duì)拷貝數(shù),一般是通過CT值之差來計(jì)算。
4 檢測(cè)方法
SYBRGreenⅠ法:
嵌入到雙鏈DNA分子后在PCR反應(yīng)體系中,加入過量SYBR熒光染料,SYBR熒光染料特異性地?fù)饺隓NA雙鏈后構(gòu)象發(fā)生變化,能夠吸收497nm的激發(fā)光并發(fā)出520nm的熒光;而不摻入DNA雙鏈中的染料分子不會(huì)發(fā)射任何熒光信號(hào),從而保證熒光信號(hào)的增加與PCR產(chǎn)物的增加完全同步。
TaqMan探針法:
擴(kuò)增時(shí)加入一個(gè)特異性的寡核苷酸熒光探針,兩端分別標(biāo)記一個(gè)報(bào)告熒光基團(tuán)和一個(gè)淬滅熒光基團(tuán)。探針完整時(shí),報(bào)告基團(tuán)發(fā)射的熒光信號(hào)被淬滅基團(tuán)吸收;PCR擴(kuò)增時(shí),Taq酶的5′-3’外切酶活性將探針酶切降解,使報(bào)告熒光基團(tuán)和淬滅熒光基團(tuán)分離,從而熒光監(jiān)測(cè)系統(tǒng)可接收到熒光信號(hào),即每擴(kuò)增一條DNA鏈,就有一個(gè)熒光分子形成,實(shí)現(xiàn)了熒光信號(hào)的累積與PCR產(chǎn)物形成完全同步
5 qPCR的實(shí)驗(yàn)流程
6 部分基因列表如下:
| Gene | Classification | Mechanism |
| catA1、catB3、cfr等 | (flor)/(chlor)/(am)phenicol | deactivate |
| cmlA1、cmx(A)、floR等 | efflux | |
| qnrA等 | unknown | |
| aac、aacA/aphD、aacC、aacC1、aacC2、aacC4、aadA、aadD、aadE、aph、aph6ia、aphA1(akakanR)、spcN-01、spcN-02、str、strA、strB等 | Aminoglycosides | deactivate |
| ampC/blaDHA、ampC、bla1、blaCMY、blaCTX、blaGES、bla-L1、blaMOX/blaCMY、blaOCH、blaOKP、blaOXA1/blaOXA30、blaOXY、blaPAO、blaPER、blaPSE、blaROB、blaSFO、blaSHV-01、blaTEM、blaTLA、blaVEB、blaVIM、blaZ、cepA、cfiA、cfxA、cphA、fox5、NDM1、ampC等 | Beta_Lactamas | deactivate |
| mecA、pbp、pbp2x、Pbp5、penA等 | Beta_Lactamas | protection |
| int等 | MGEs | integrase |
| IS613、tnpA、Tp614等 | transposase | |
| ereB、lnuA、lnuB、lnuC、mphA、mphB、mphC、vatB、vatC、vatE、vgb、vgbB等 | MLSB | deactivate |
| carB、ImrA、matA/mel、mdtA、mefA、msrC、oleC、vgaA、vgbB、msrA等 | efflux | |
| erm、ermA、ermA/ermTR、ermB、ermC、ermF、ermJ/ermD、ermK、ermT、ermX、ermY等 | protection | |
| acrA、adeA、acrF、ceoA、cmeA、cmr、marR、mdetl1、mdtE/yhiU、mepA、mexA、mexD、mexE、mexF、mtrC、mtrD、oprD、oprJ、pmrA、qac、qacA、qacA/qacB、qacH、rarD、sdeB、tolC、ttgB、yceE/mdtG、yceL/mdtH、yidY/mdtL、ttgA、emrD等 | Multidrug | efflux |
| fabK、bacA、bacA、fosB、fosX、sat4等 | other | deactivate |
| imiR、nisB等 | unknown | |
| dfrA、folA等 | Sulfonamides | deactivate |
| sul等 | protection | |
| tetA、tetB、tetC、tetD、tetE、tetG、tetH、tetJ、tetK、tetL、tetPA、tet、tetV等 | Tetracyclines | efflux |
| tet(32)、tet(36)、tet(36)、tetM、tetO、tetW、tetPB、tetS、tetT、tetQ等 | protection | |
| tet(34)、tet(37)、tetU-01、tetX、tet(35)等 | unknown | |
| vanA、vanB、vanC、vanG、vanHB、vanHD、vanRA、vanRB、vanRC、vanRD、vanSA、vanSB、vanSC、vanTC、vanTE、vanTG、vanWB、vanWG、vanXA、vanXB、vanXD、vanYB、vanYD等 | Vancomycin | protection |
7 qPCR檢測(cè)送樣要求
| 樣本類型 | 樣品量/例 | 備注 | |
| 環(huán)境 | 土壤/沉積物/淤泥 | 1g | |
| 湖水/海水/河水 | 1L,用濾膜或離心富集 | 過 0.22μm 的濾膜,或者 12000rpm 離心,進(jìn)行富集。 | |
| 污水 | 20ml | 若樣本清亮則可適當(dāng)?shù)囟嗳 ? | |
| 泥水混合樣 | 2ml | ||
| 空氣 | 根據(jù)實(shí)驗(yàn)需要,用無菌濾膜過濾空氣。 | ||
| 發(fā)酵物 | 固體 2g,液體 20ml |
| 樣本類型 | 樣品量/例 | 備注 | |
| 人體 | 糞便 | ≥3g | |
| 皮膚 | 5 個(gè)采集拭子 | 采集 5cm*5cm 面積,反復(fù)刮取 20 次。 | |
| 生殖道 | 5 個(gè)采集拭子 | 采集陰道口內(nèi) 4cm 處分泌物, 每個(gè)拭子轉(zhuǎn) 3 圈。 | |
| 牙菌斑/舌苔 | 5 個(gè)采集拭子 | 在采集的部位,刮取 10 次左右。 | |
| 唾液 | 10ml | ||
| 痰液 | 10ml 或 2-3 口痰液 | ||
| 鼻腔 | 5 個(gè)采集拭子 | 采集鼻腔內(nèi)粘膜上的分泌物,轉(zhuǎn) 3 圈。 | |
| 肺部灌洗液 | 30ml 富集液 | 對(duì)灌洗液進(jìn)行離心富集。 | |
| 腸道/胃組織 |
5mm*5mm*3mm 3 塊 |
盡量多一取些。 | |
| 血液 | 3ml 全血 | 用 EDTA 抗凝管,顛倒 8-10 次。 不建議用肝素。 | |
| 尿液 | 30mL 尿液 | 取中段尿?yàn)橐恕?/span> | |
| 母乳 | 5mL | ||
| 動(dòng)物 | 糞便 | ≥3g | 最少 0.05g。 |
|
盲腸/結(jié)腸/胃 組織 |
≥3g | 至少 1g,如果實(shí)驗(yàn)條件允許,盡可能多的收集樣本 | |
| 腸道內(nèi)容物 | ≥3g | 最少 0.05g。建議客戶自己取內(nèi)容物,可以用 PBS 沖洗。 |
提醒
1 因?yàn)閝PCR絕對(duì)定量最終得到的是單位重量,或是單位體積目標(biāo)基因的拷貝數(shù),所以如果客戶送DNA,建議客戶記錄抽提DNA時(shí)樣本的使用重量或是體積,方便后繼對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行轉(zhuǎn)化。
2 送樣時(shí)請(qǐng)盡量使用冰盒(泡沫盒+干冰),以保證運(yùn)輸過程中的低溫條件(干冰的揮發(fā)消耗量約為 3-4 公斤/天)。在打包時(shí)放入足量的干冰, 將樣本埋入干冰中, 為了保持冰盒中的低溫環(huán)境,建議采用加厚的泡沫盒
8 qPCR結(jié)果展示
標(biāo)準(zhǔn)曲線
擴(kuò)增曲線
熔解曲線
定量結(jié)果
| 微基編號(hào) | 拷貝數(shù) | 樣本稀釋倍數(shù) | 抽提樣本重量(g) | 基因組DNA體積(μL) | 原始樣本目標(biāo)基因拷貝數(shù)copies/μL DNA | 原始樣本目標(biāo)基因平均拷貝數(shù)copies/μL DNA | 原始樣本目標(biāo)基因拷貝數(shù)copies/g樣本 | 原始樣本目標(biāo)基因平均拷貝數(shù)copies/g樣本 |
| 1 | 1.08E+06 | 200 | 0.237 | 50 | 2.17E+08 | 2.26E+08 | 4.58E+10 | 4.76E+10 |
| 1 | 1.23E+06 | 200 | 0.237 | 50 | 2.47E+08 | 5.20E+10 | ||
| 1 | 1.07E+06 | 200 | 0.237 | 50 | 2.14E+08 | 4.51E+10 | ||
| 2 | 7.28E+05 | 200 | 0.24 | 50 | 1.46E+08 | 1.49E+08 | 3.03E+10 | 3.09E+10 |
| 2 | 7.55E+05 | 200 | 0.24 | 50 | 1.51E+08 | 3.15E+10 | ||
| 2 | 7.44E+05 | 200 | 0.24 | 50 | 1.49E+08 | 3.10E+10 | ||
| 3 | 1.24E+06 | 200 | 0.25 | 50 | 2.48E+08 | 2.59E+08 | 4.96E+10 | 5.19E+10 |
| 3 | 1.35E+06 | 200 | 0.25 | 50 | 2.69E+08 | 5.39E+10 | ||
| 3 | 1.30E+06 | 200 | 0.25 | 50 | 2.61E+08 | 5.21E+10 | ||
| 4 | 1.61E+06 | 200 | 0.234 | 50 | 3.21E+08 | 3.22E+08 | 6.87E+10 | 6.87E+10 |
| 4 | 1.60E+06 | 200 | 0.234 | 50 | 3.19E+08 | 6.82E+10 | ||
| 4 | 1.62E+06 | 200 | 0.234 | 50 | 3.24E+08 | 6.93E+10 | ||
| 5 | 1.27E+05 | 200 | 0.175 | 50 | 2.54E+07 | 2.66E+07 | 7.25E+09 | 7.59E+09 |
| 5 | 1.33E+05 | 200 | 0.175 | 50 | 2.66E+07 | 7.61E+09 | ||
| 5 | 1.39E+05 | 200 | 0.175 | 50 | 2.77E+07 | 7.91E+09 |
9 參考文獻(xiàn)
1ujin gDuan et.al. Gut resistomes, microbiota and antibiotic residues in Chinese patients undergoing antibiotic administration and healthyindividuals.2020. Science of the Total Environment.(研究中國健康人和患者)
抗生素濃度與ARG總豐度呈正相關(guān),與ARG總豐度呈負(fù)相關(guān)ARGs和細(xì)菌群落的多樣性,這表明抗生素的使用可以形成抗生素耐藥性和腸道細(xì)菌群落。cfxA基因作為一種潛在的生物標(biāo)志物,以區(qū)分在中國廣泛接受抗生素治療的患者和健康的個(gè)人在患者的腸道中檢測(cè)并顯著富集。
2JieFenget.al.Antibiotic Resistome in alarge-scale healthy human gut microbiota deciphered by metagenomic and network analyses.2017.Environmental microbiology.(不同國家的腸道微生物抗性基因分析)
中國人的腸道樣本中ermF、ermB、cfxA、tetQ的顯著富集,高于瑞典,可作為中國人中潛在的生物標(biāo)志物。
抗性基因檢測(cè),首發(fā)于微基生物。
]]>特定功能基因檢測(cè),首發(fā)于微基生物。
]]>
特定功能基因指的是具有某種特定作用的酶的編碼基因,通過對(duì)該酶的基因進(jìn)行qPCR定量,來確定該基因在樣本中的拷貝數(shù)。
目前研究較多的主要是氮循環(huán)過程中每個(gè)反應(yīng)的酶,碳循環(huán),硫相關(guān),砷相關(guān)的一些酶的拷貝數(shù)信息。
氮循環(huán)相關(guān)
氮是生命體核酸與蛋白質(zhì)必不可少的組成元素。氮素的生物地球化學(xué)循環(huán)(氮循環(huán))對(duì)生命的存在和持續(xù)有關(guān)鍵作用,本質(zhì)上是微生物驅(qū)動(dòng)的氮素轉(zhuǎn)化、利用及循環(huán)的過程。氮循環(huán)就是指N2、無機(jī)氮化合物、有機(jī)氮化合物在自然界中相互轉(zhuǎn)化過程的總和,包括氨化作用、硝化作用、反硝化作用、固氮作用等等。
氮循環(huán)及相關(guān)基因如下圖和下表:
| 參與途徑 | 基因名稱 | |||
| 固氮 | N2—NH4+ | nifH | Nitrogenase | 固氮酶 |
| 氨化作用 | OrgN—NH4+ | ureC | Glutamate dehydrogenase | 谷氨酸脫氫酶 |
| 硝化作用 | NH4+—NO2– | amoA | ammonia monooxygenase | 氨單加氧酶 |
| NO2–—NO3– | nxrA | nitrite oxidoreductase | 亞硝酸鹽氧化還原酶 | |
| 反硝化作用 | NO3–—NO2– | narG | nitrate reductase | 硝酸鹽還原酶 |
| NO2–—NO | nirS/nirK | nitrite reductase | 亞硝酸鹽還原酶 | |
| NO—NO2 | norB | nitric oxide reductase | 氧化還原酶 | |
| NO2—N2 | nosZ | nitrous oxide reductase | 氧化亞氮還原酶 | |
| 厭氧氨氧化 | NO2–—N2 | hzo | Hydrazine oxidase | 聯(lián)氨氧化酶 |
| 異化N還原到銨 | NO3–—NO2– | napA | nitrate reductase | 硝酸鹽還原酶 |
| NO2–—NH4+ | nrfA |
c-type cytochrome nitrite reductase |
細(xì)胞色素c亞硝酸鹽還原酶 | |
碳循環(huán)相關(guān)
碳循環(huán)主要是碳素的固定和轉(zhuǎn)化過程,主要包括碳固定、甲烷產(chǎn)生、甲烷氧化。
自養(yǎng)微生物具有極強(qiáng)的環(huán)境適應(yīng)性和固碳潛力。目前發(fā)現(xiàn)的5條主要生物固碳途徑中,卡爾文循環(huán)是自養(yǎng)生物固定CO2的主要途徑,其中核酮糖-1,5-二磷酸羧化酶/加氧酶(RubisCO)是卡爾文循環(huán)中的關(guān)鍵酶,因此RubisCO及其編碼基因被許多學(xué)者用于不同生態(tài)環(huán)境中固碳微生物群落結(jié)構(gòu)和多樣性的研究。
產(chǎn)甲烷菌是重要的環(huán)境微生物,在自然界的碳素循環(huán)中起重要作用。產(chǎn)甲烷菌是一類能夠?qū)o機(jī)或有機(jī)化合物厭氧發(fā)酵轉(zhuǎn)化成甲烷和二氧化碳的古細(xì)菌。
甲烷氧化菌是甲烷進(jìn)入大氣的重要屏障,利用它降低人為源向大氣排放的甲烷量,對(duì)于緩解全球溫室效應(yīng)具有潛在價(jià)值.
碳循環(huán)過程和相關(guān)基因如圖和下表:
| 作用 | 基因名稱 | |||
| 碳相關(guān) | 固碳 | cbbL/cbbM |
Ribulose-l,5-bisphosphate carboxylase/oxygenase |
核酮糖-1.5-二磷酸羧化酶/加氧酶 |
| 產(chǎn)生甲烷 | mcrA | methyl coenzyme M reduc-tase | 甲基輔酶 M 還原酶 | |
| 甲烷氧化 | pmoA | particulate methane monooxygenase | 甲烷氧化單加氧酶 | |
硫相關(guān)和砷相關(guān)的檢測(cè)基因見下表:
| 作用 | 基因名稱 | |||
| 硫相關(guān) | 硫酸鹽還原 | dsrA | dissimilatory sulfite reductase | 異化型亞硫酸鹽還原酶 |
| dsrB | dissimilatory sulfite reductase | 異化型亞硫酸鹽還原酶 | ||
| 硫氧化 | soxB | Sulfur oxidation | 硫氧化酶 | |
| 砷相關(guān) | 砷氧化 | aioA | arsenite (As(III)) oxidase genes | 亞砷酸鹽氧化酶基因 |
| 砷呼吸還原 | arrA | respiratory arsenate (As(V)) reductase genes | 呼吸性砷酸鹽還原酶基因 | |
| 砷解毒還原 | arsC | As(V)reductase genes | 砷還原酶基因 | |
| 砷甲基化 | arsM | As(III) methyltransferase genes | 砷甲基轉(zhuǎn)移酶基因 | |
2 qPCR的原理
實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)(Real-timeQuantitativePCR,qPCR)是指在PCR反應(yīng)體系中加入可與DNA產(chǎn)物特異性結(jié)合的熒光基團(tuán),利用熒光信號(hào)積累實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)整個(gè)PCR進(jìn)程,最終通過相對(duì)定量(與內(nèi)參基因?qū)Ρ龋┗蚪^對(duì)定量(通過標(biāo)準(zhǔn)曲線對(duì)未知模板進(jìn)行定量)的方法確定各個(gè)樣本的本底表達(dá)量。
3 3種熒光試劑的工作原理及區(qū)別
SYBRGreenⅠ法:
嵌入到雙鏈DNA分子后在PCR反應(yīng)體系中,加入過量SYBR熒光染料,SYBR熒光染料特異性地?fù)饺隓NA雙鏈后構(gòu)象發(fā)生變化,能夠吸收497nm的激發(fā)光并發(fā)出520nm的熒光;而不摻入DNA雙鏈中的染料分子不會(huì)發(fā)射任何熒光信號(hào),從而保證熒光信號(hào)的增加與PCR產(chǎn)物的增加完全同步。
TaqMan探針法:
擴(kuò)增時(shí)加入一個(gè)特異性的寡核苷酸熒光探針,兩端分別標(biāo)記一個(gè)報(bào)告熒光基團(tuán)和一個(gè)淬滅熒光基團(tuán)。探針完整時(shí),報(bào)告基團(tuán)發(fā)射的熒光信號(hào)被淬滅基團(tuán)吸收;PCR擴(kuò)增時(shí),Taq酶的5′-3’外切酶活性將探針酶切降解,使報(bào)告熒光基團(tuán)和淬滅熒光基團(tuán)分離,從而熒光監(jiān)測(cè)系統(tǒng)可接收到熒光信號(hào),即每擴(kuò)增一條DNA鏈,就有一個(gè)熒光分子形成,實(shí)現(xiàn)了熒光信號(hào)的累積與PCR產(chǎn)物形成完全同步
SYBRGREEN法和TaqMan探針法的區(qū)別
| 方法 | 優(yōu)點(diǎn) | 缺點(diǎn) |
|
SYBR GREEN法 |
高靈敏度,操作簡(jiǎn)單,不影響酶促反應(yīng),價(jià)格便宜 |
1與探針法相比,對(duì)引物特異性要求較高,需進(jìn)行熔解曲線分析 2靈敏度相對(duì)較低。 |
|
TaqMan 探針法 |
1具有高度特異性 2更高的靈敏度 3可同時(shí)檢測(cè)幾種不同的熒光信號(hào)的產(chǎn)物 |
1探針價(jià)格較高 2需要不同引物的擴(kuò)增效率一致,對(duì)引物的設(shè)計(jì)及擴(kuò)增條件要求比較高 |
4 qPCR的實(shí)驗(yàn)方法
| 實(shí)驗(yàn)方法 | 原理 | 技術(shù)應(yīng)用 | 相關(guān)應(yīng)用 |
| 絕對(duì)定量(AbsoluteQuantification,AQ) | 是測(cè)定目的基因在樣本中的分子數(shù)目,通過構(gòu)建標(biāo)準(zhǔn)曲線對(duì)未知模板進(jìn)行分子數(shù)目的定量,即通常所說的拷貝數(shù)。 |
特定微生物的拷貝數(shù)檢測(cè) 特定功能基因的拷貝數(shù)檢測(cè) 特定抗性基因的拷貝數(shù)檢測(cè) |
1臨床疾病診斷 2動(dòng)物疾病檢測(cè) 3食品安全 4科學(xué)研究 5應(yīng)用行業(yè):各級(jí)各類醫(yī)療機(jī)構(gòu)、大學(xué)及研究所、CDC、檢驗(yàn)檢疫局、獸醫(yī)站、食品企業(yè)及乳品廠等。 |
| 相對(duì)定量(RelativeQuantification,RQ) | 測(cè)定目的基因在樣本中的含量的相對(duì)比例,而不需要知道它們?cè)诿總€(gè)樣本中的絕對(duì)拷貝數(shù),一般是通過CT值之差來計(jì)算。 |
樣本中某種特定微生物拷貝數(shù)占全部微生物拷貝數(shù)的比例 某種功能基因的微生物拷貝數(shù)占全部微生物拷貝數(shù)的比例 某種抗性基因拷貝數(shù)占全部微生物拷貝數(shù)的比例 |
|
相對(duì)定量和絕對(duì)定量的數(shù)據(jù)計(jì)算方法
標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒拷貝數(shù)計(jì)算:
每微升拷貝數(shù)(copies/μl)=[質(zhì)粒濃度(ng/ul)×10-9×6.02×1023]/克隆產(chǎn)物相對(duì)分子質(zhì)量
原始樣本目標(biāo)基因拷貝數(shù)copies/μLDNA=拷貝數(shù)*稀釋倍數(shù)
原始樣本目標(biāo)基因拷貝數(shù)copies/g樣本=(原始樣本目標(biāo)基因拷貝數(shù)copies/μLDNA*基因組DNA體積)/樣本抽提重量,(如果客戶樣本為DNA樣本,則不需要計(jì)算copies/g樣本)
相對(duì)定量的計(jì)算:
步驟1:內(nèi)參基因均一化樣本差異:Ct目的基因–Ct內(nèi)參基因=△Ct
步驟2:其他樣本和對(duì)照樣本比較:△Ct處理樣本–△Ct對(duì)照樣本=△△Ct
步驟3:使用公式計(jì)算:倍數(shù)變化=2-△△Ct
5 qPCR的實(shí)驗(yàn)流程
6 qPCR檢測(cè)送樣要求
| 樣本類型 | 樣品量/例 | 備注 | |
| 環(huán)境 | 土壤/沉積物/淤泥 | 1g | |
| 湖水/海水/河水 | 1L,用濾膜或離心富集 | 過 0.22μm 的濾膜,或者 12000rpm 離心,進(jìn)行富集。 | |
| 污水 | 20ml | 若樣本清亮則可適當(dāng)?shù)囟嗳 ? | |
| 泥水混合樣 | 2ml | ||
| 空氣 | 根據(jù)實(shí)驗(yàn)需要,用無菌濾膜過濾空氣。 | ||
| 發(fā)酵物 | 固體 2g,液體 20ml |
| 樣本類型 | 樣品量/例 | 備注 | |
| 人體 | 糞便 | ≥3g | |
| 皮膚 | 5 個(gè)采集拭子 | 采集 5cm*5cm 面積,反復(fù)刮取 20 次。 | |
| 生殖道 | 5 個(gè)采集拭子 | 采集陰道口內(nèi) 4cm 處分泌物, 每個(gè)拭子轉(zhuǎn) 3 圈。 | |
| 牙菌斑/舌苔 | 5 個(gè)采集拭子 | 在采集的部位,刮取 10 次左右。 | |
| 唾液 | 10ml | ||
| 痰液 | 10ml 或 2-3 口痰液 | ||
| 鼻腔 | 5 個(gè)采集拭子 | 采集鼻腔內(nèi)粘膜上的分泌物,轉(zhuǎn) 3 圈。 | |
| 肺部灌洗液 | 30ml 富集液 | 對(duì)灌洗液進(jìn)行離心富集。 | |
| 腸道/胃組織 |
5mm*5mm*3mm 3 塊 |
盡量多一取些。 | |
| 血液 | 3ml 全血 | 用 EDTA 抗凝管,顛倒 8-10 次。 不建議用肝素。 | |
| 尿液 | 30mL 尿液 | 取中段尿?yàn)橐恕?/span> | |
| 母乳 | 5mL | ||
| 動(dòng)物 | 糞便 | ≥3g | 最少 0.05g。 |
|
盲腸/結(jié)腸/胃 組織 |
≥3g | 至少 1g,如果實(shí)驗(yàn)條件允許,盡可能多的收集樣本 | |
| 腸道內(nèi)容物 | ≥3g | 最少 0.05g。建議客戶自己取內(nèi)容物,可以用 PBS 沖洗。 |
提醒
1 因?yàn)閝PCR絕對(duì)定量最終得到的是單位重量,或是單位體積目標(biāo)基因的拷貝數(shù),所以如果客戶送DNA,建議客戶記錄抽提DNA時(shí)樣本的使用重量或是體積,方便后繼對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行轉(zhuǎn)化。
2 送樣時(shí)請(qǐng)盡量使用冰盒(泡沫盒+干冰),以保證運(yùn)輸過程中的低溫條件(干冰的揮發(fā)消耗量約為 3-4 公斤/天)。在打包時(shí)放入足量的干冰, 將樣本埋入干冰中, 為了保持冰盒中的低溫環(huán)境,建議采用加厚的泡沫盒
7 qPCR結(jié)果
標(biāo)準(zhǔn)曲線
擴(kuò)增曲線
熔解曲線
定量結(jié)果
| 微基編號(hào) | 拷貝數(shù) | 樣本稀釋倍數(shù) | 抽提樣本重量(g) | 基因組DNA體積(μL) | 原始樣本目標(biāo)基因拷貝數(shù)copies/μL DNA | 原始樣本目標(biāo)基因平均拷貝數(shù)copies/μL DNA | 原始樣本目標(biāo)基因拷貝數(shù)copies/g樣本 | 原始樣本目標(biāo)基因平均拷貝數(shù)copies/g樣本 |
| 1 | 1.08E+06 | 200 | 0.237 | 50 | 2.17E+08 | 2.26E+08 | 4.58E+10 | 4.76E+10 |
| 1 | 1.23E+06 | 200 | 0.237 | 50 | 2.47E+08 | 5.20E+10 | ||
| 1 | 1.07E+06 | 200 | 0.237 | 50 | 2.14E+08 | 4.51E+10 | ||
| 2 | 7.28E+05 | 200 | 0.24 | 50 | 1.46E+08 | 1.49E+08 | 3.03E+10 | 3.09E+10 |
| 2 | 7.55E+05 | 200 | 0.24 | 50 | 1.51E+08 | 3.15E+10 | ||
| 2 | 7.44E+05 | 200 | 0.24 | 50 | 1.49E+08 | 3.10E+10 | ||
| 3 | 1.24E+06 | 200 | 0.25 | 50 | 2.48E+08 | 2.59E+08 | 4.96E+10 | 5.19E+10 |
| 3 | 1.35E+06 | 200 | 0.25 | 50 | 2.69E+08 | 5.39E+10 | ||
| 3 | 1.30E+06 | 200 | 0.25 | 50 | 2.61E+08 | 5.21E+10 | ||
| 4 | 1.61E+06 | 200 | 0.234 | 50 | 3.21E+08 | 3.22E+08 | 6.87E+10 | 6.87E+10 |
| 4 | 1.60E+06 | 200 | 0.234 | 50 | 3.19E+08 | 6.82E+10 | ||
| 4 | 1.62E+06 | 200 | 0.234 | 50 | 3.24E+08 | 6.93E+10 | ||
| 5 | 1.27E+05 | 200 | 0.175 | 50 | 2.54E+07 | 2.66E+07 | 7.25E+09 | 7.59E+09 |
| 5 | 1.33E+05 | 200 | 0.175 | 50 | 2.66E+07 | 7.61E+09 | ||
| 5 | 1.39E+05 | 200 | 0.175 | 50 | 2.77E+07 | 7.91E+09 |
8 術(shù)語解釋
Ct值(Cyclethreshold,循環(huán)閾值):每個(gè)反應(yīng)管內(nèi)的熒光信號(hào)到達(dá)設(shè)定閾值時(shí)所經(jīng)歷的循環(huán)數(shù)。
熒光閾值(threshold)的設(shè)定:PCR反應(yīng)的前15個(gè)循環(huán)的熒光信號(hào)作為熒光本底信號(hào),熒光閾值的缺省(默認(rèn))設(shè)置是3-15個(gè)循環(huán)的熒光信號(hào)的標(biāo)準(zhǔn)偏差的10倍,即:threshold=10*SDcycle3-15
基線(baseline):在PCR擴(kuò)增反應(yīng)的最初數(shù)個(gè)循環(huán)里,熒光信號(hào)變化不大,接近一條直線,即稱為基線。
熔解曲線Tm(TmOfMeltingCurve):SYBRGreen染料發(fā)實(shí)驗(yàn)結(jié)束后需對(duì)qPCR產(chǎn)物加熱,隨著溫度的升高,雙鏈接擴(kuò)增產(chǎn)物逐漸解鏈,導(dǎo)致熒光強(qiáng)度下降,到達(dá)某一溫度時(shí),會(huì)導(dǎo)致大量的產(chǎn)物解鏈,熒光急劇下降,將此溫度稱為Tm值。不同PCR產(chǎn)物Tm值不同,從而可對(duì)PCR的特異性進(jìn)行鑒定。
9 參考文獻(xiàn)
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特定功能基因檢測(cè),首發(fā)于微基生物。
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