• <cite id="u60o2"><nav id="u60o2"></nav></cite>
    
    
  • <samp id="u60o2"><pre id="u60o2"></pre></samp>
  • <tr id="u60o2"></tr>
    <th id="u60o2"></th>
    <td id="u60o2"></td><kbd id="u60o2"><acronym id="u60o2"></acronym></kbd>
      首頁 > qPCR ddPCR > 高宿主 DNA 殘留?ddPCR 輕松定量微生物

      高宿主 DNA 殘留?ddPCR 輕松定量微生物

      在生物學(xué)研究和醫(yī)學(xué)診斷領(lǐng)域,準(zhǔn)確檢測和定量微生物對于了解疾病機(jī)制、制定治療方案至關(guān)重要。然而,當(dāng)組織樣本中存在高宿主DNA殘留時,傳統(tǒng)的定量方法,如定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(qPCR),常常會受到宿主DNA的嚴(yán)重干擾,導(dǎo)致檢測結(jié)果出現(xiàn)偏差。而數(shù)字滴液PCR(ddPCR)技術(shù)的出現(xiàn),為解決這一難題提供了創(chuàng)新且有效的途徑。

      ddPCR 檢測方法原理

      ddPCR是一種基于PCR技術(shù)的核酸絕對定量分析方法。它將傳統(tǒng)的PCR反應(yīng)混合物分割成數(shù)以萬計的納升級微滴,每個微滴中包含極少量的模板DNA分子以及完整的PCR反應(yīng)試劑。在PCR擴(kuò)增過程中,這些微滴相互獨(dú)立進(jìn)行反應(yīng),互不干擾。最終通過熒光信號檢測每個微滴中是否含有目標(biāo)DNA分子。根據(jù)泊松分布原理,通過統(tǒng)計陽性微滴的數(shù)量,可以計算出原始樣本中目標(biāo)DNA分子的絕對濃度。

      引物和探針的設(shè)計在ddPCR檢測中起著核心作用,是檢測成功的關(guān)鍵環(huán)節(jié)。合理且精心設(shè)計的引物和探針,能夠顯著提升檢測的特異性和靈敏度,進(jìn)而更精準(zhǔn)地識別并檢測樣本中的目標(biāo)微生物。


      ddPCR特異性菌種 屬引物/探針設(shè)計

      微基生物憑借專業(yè)的生物信息學(xué)團(tuán)隊和先進(jìn)的生物信息學(xué)軟件及工具,嚴(yán)格遵循引物/探針設(shè)計原則,為客戶量身定制引物和探針。

      序列分析:對客戶提供的目標(biāo)微生物或基因序列進(jìn)行全面分析,結(jié)合數(shù)據(jù)庫信息,深入研究目標(biāo)序列特征GC含量、潛在二級結(jié)構(gòu)、與其他序列的同源性等。

      個性化設(shè)計:根據(jù)客戶實(shí)驗(yàn)類型(科研檢測、環(huán)境監(jiān)測等)、樣本特性(高宿主DNA 殘留樣本、復(fù)雜微生物群落樣本等)以及實(shí)驗(yàn)?zāi)康模ǘ繖z測、定性分析等),設(shè)計符合特定需求的引物和探針。

      多輪優(yōu)化與驗(yàn)證:設(shè)計完成后,借助軟件模擬引物和探針在不同條件下與目標(biāo)序列的結(jié)合情況進(jìn)行多輪虛擬篩選和優(yōu)化。對設(shè)計好的引物和探針進(jìn)行預(yù)實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證,調(diào)整優(yōu)化,確保其在實(shí)際實(shí)驗(yàn)中展現(xiàn)出良好的擴(kuò)增效果和檢測性能。

      技術(shù)支持與服務(wù):為客戶提供全方位技術(shù)支持,從引物/探針設(shè)計咨詢、實(shí)驗(yàn)方案制定到實(shí)驗(yàn)過程指導(dǎo)、結(jié)果分析解讀等,解答客戶在實(shí)驗(yàn)過程中遇到的問題。


      高宿主DNA殘留樣本的類型及ddPCR應(yīng)用

      高宿主DNA殘留樣本常見的樣本類型包括組織樣本、糞便樣本、口腔拭子樣本、血液樣本、環(huán)境樣本以及食品樣本。ddPCR技術(shù)憑借其高靈敏度、絕對定量能力和高特異性,提高檢測的準(zhǔn)確性和可靠性。

      液滴數(shù)字PCR (ddPCR)與定量PCR (qPCR)對比

      文獻(xiàn)分享

      1.腫瘤組織中的微生物檢測

      文獻(xiàn)Accuracy and Clinical Relevance of Intra-Tumoral Fusobacterium nucleatum Detection in Formalin-Fixed Paraffin-Embedded (FFPE) Tissue by Droplet Digital PCR(ddPCR) in Colorectal Cancer.(2022年)

      研究背景Fusobacterium nucleatum(Fn)被認(rèn)為與結(jié)直腸癌的發(fā)生和預(yù)后密切相關(guān),是一種潛在的預(yù)后生物標(biāo)志物。然而,傳統(tǒng)的qPCR方法在檢測FFPE組織中的Fn時存在局限性,因此研究者探索了ddPCR技術(shù)在檢測FFPE組織中Fn的準(zhǔn)確性和臨床相關(guān)性。

      研究方法:

      1.使用ddPCR技術(shù)優(yōu)化檢測條件,包括退火溫度和靈敏度評估。

      2.在139例CRC FFPE樣本中檢測Fn DNA,并與qPCR結(jié)果進(jìn)行比較。

      3.評估ddPCR檢測Fn的準(zhǔn)確性,并分析其與臨床病理特征和分子特征的相關(guān)性。

      研究結(jié)果

      1.ddPCR檢測Fn的檢測下限為2.7拷貝/反應(yīng),能夠檢測到20.1%的CRC樣本為Fn高表達(dá)。

      2.與qPCR相比,ddPCR檢測Fn的靈敏度更高,但兩者結(jié)果一致性較低。

      3.Fn高表達(dá)與CRC的不良預(yù)后相關(guān),包括腫瘤位置、分化程度、MSI狀態(tài)和BRAF突變等。

      4.Kaplan-Meier生存分析顯示,ddPCR檢測到Fn高表達(dá)的患者生存率較低,但未達(dá)到統(tǒng)計學(xué)顯著性。

      ddPCR和qPCR檢測的Fn DNA的量,并基于中位數(shù)將樣本分為高和低/陰性兩組。ddPCR檢測到的Fn高樣本比例顯著高于qPCR。

      ROC曲線評估ddPCR檢測Fn DNA的準(zhǔn)確性ddPCR在檢測FFPE樣本中的Fn DNA時具有較高的敏感性和特異性。

      結(jié)論:ddPCR是一種高靈敏度的檢測方法,能夠準(zhǔn)確檢測FFPE組織中的Fn DNA,并揭示其在CRC中的臨床相關(guān)性。ddPCR在常規(guī)CRC診斷中具有潛在應(yīng)用價值。

       

      2.糞便樣本中的腸道微生物定量

      文獻(xiàn)Detecting and quantifying Veillonella by real-time quantitative PCR and droplet digital PCR.(2024年)

      研究背景Veillonella屬細(xì)菌是革蘭氏陰性機(jī)會性病原體,與多種疾病(如牙周炎、炎癥性腸病和泌尿系感染)密切相關(guān)。研究者設(shè)計了一種基于16S rRNA基因序列的引物和探針,通過qPCR和ddPCR技術(shù)定量檢測糞便樣本中的Veillonella豐度。

      研究方法

      1.基于16S rRNA基因序列設(shè)計引物和探針,進(jìn)行qPCR和ddPCR檢測。

      2.使用模擬臨床樣本測試兩種方法的特異性和靈敏度。

      3.收集炎癥性腸病(IBD)患者的臨床樣本,驗(yàn)證檢測系統(tǒng)的有效性。

      研究結(jié)果:

      1.qPCR的檢測靈敏度100拷貝/μL,能夠準(zhǔn)確檢測103108CFU/mL的Veillonella濃度。

      2.ddPCR的檢測靈敏度為11.3拷貝/μL,適合檢測101104CFU/mL的低豐度樣本。

      3.臨床樣本中,qPCR和ddPCR的檢測結(jié)果與平板計數(shù)法一致,驗(yàn)證了檢測系統(tǒng)的準(zhǔn)確性。

      4.通過ddPCR檢測到的Veillonella種類包括V. dispar、V. nakazawae和V. rodentium。      

      qPCR檢測Veillonella的特異性和靈敏度。qPCR的靈敏度100拷貝/μL,適用于檢測濃度范圍103108CFU/mL的Veillonella樣本。

      ddPCR檢測Veillonella的特異性和靈敏度。ddPCR的靈敏度11.3拷貝/μL,適用于檢測低豐度(101104CFU/mL)Veillonella樣本。

      比較qPCR和ddPCR在檢測Veillonella時的能力差異。qPCR適用于高濃度樣本的檢測,而ddPCR更適合低濃度樣本的檢測。

      比較qPCR和ddPCR在模擬臨床樣本(糞便樣本)中檢測Veillonella的能力。

      結(jié)論:qPCR和ddPCR技術(shù)能夠快速、準(zhǔn)確地檢測Veillonella,ddPCR尤其適用于低豐度樣本的檢測。

       

      3.血液樣本中的病原體檢測

      文獻(xiàn)Sensitive and rapid identification of pathogens by droplet digital PCR in a cohort of septic patients: a prospective diagnostic study.(2024年)

      研究背景:膿毒癥是重癥監(jiān)護(hù)病房中死亡率較高的疾病之一,早期準(zhǔn)確的病原體檢測對于改善患者預(yù)后至關(guān)重要。研究者評估了ddPCR技術(shù)在膿毒癥患者中快速、靈敏地檢測病原體的診斷效能。

      研究方法

      1.進(jìn)行前瞻性診斷研究,納入89名患者的100例膿毒癥發(fā)作。

      2.使用ddPCR技術(shù)檢測血液樣本中的病原體,并與血培養(yǎng)結(jié)果進(jìn)行比較。

      3.評估ddPCR的敏感性、特異性、檢測率和周轉(zhuǎn)時間(TAT)。

      4.分析經(jīng)驗(yàn)性抗菌治療對ddPCR診斷性能的影響,并對ddPCR的定量結(jié)果進(jìn)行動態(tài)監(jiān)測。

      研究結(jié)果:

      1.ddPCR的總體敏感性為75.0%,特異性為69.7%,檢測率比血培養(yǎng)高出17%。

      2.ddPCR的周轉(zhuǎn)時間為2.5小時,顯著快于血培養(yǎng)(中位數(shù)47.5小時)。

      3.在經(jīng)驗(yàn)性抗菌治療組和非經(jīng)驗(yàn)性抗菌治療組中,ddPCR的敏感性和特異性無顯著差異。

      4.ddPCR能夠檢測到多種抗菌藥物耐藥基因,且與血培養(yǎng)結(jié)果一致。

      5.動態(tài)監(jiān)測顯示,ddPCR的定量結(jié)果與CRP和PCT水平的變化趨勢一致,表明其可用于膿毒癥的動態(tài)監(jiān)測。

      ddPCR檢測的實(shí)驗(yàn)流程。ddPCR檢測的高效性和標(biāo)準(zhǔn)化,適合快速診斷膿毒癥患者的病原體。

       ddPCR和血培養(yǎng)檢測到的病原體分布。ddPCR檢測病原體種類和數(shù)量上優(yōu)于血培養(yǎng),能夠更全面地識別膿毒癥患者的病原體。

      結(jié)論:與血培養(yǎng)相比,ddPCR在膿毒癥患者中具有更高的病原體檢測敏感性,能夠快速提供病原體和耐藥信息,且其定量結(jié)果與炎癥指標(biāo)的變化趨勢一致,可作為膿毒癥患者病原體負(fù)荷的動態(tài)監(jiān)測工具。

       

      ddPCR技術(shù)憑借其獨(dú)特的優(yōu)勢,在高宿主DNA殘留樣本的微生物檢測領(lǐng)域展現(xiàn)出巨大的應(yīng)用潛力。從腫瘤組織到糞便、血液樣本,再到復(fù)雜的環(huán)境樣本檢測,ddPCR在眾多場景下具有實(shí)現(xiàn)精準(zhǔn)定量檢測的潛力,能為微生物檢測提供有效的技術(shù)支持。

       

      引用文獻(xiàn)

      1. Datorre, J. G., et al. (2022). Accuracy and Clinical Relevance of Intra-Tumoral Fusobacterium nucleatum Detection in FFPE Tissue by ddPCR in Colorectal Cancer. Diagnostics, 12(1), 114.

      2. Ding, Z., et al. (2024). Detecting and Quantifying Veillonella by Real-Time Quantitative PCR and Droplet Digital PCR. Applied Microbiology and Biotechnology, 108, 45.

      3. Wu, Z., et al. (2024). Sensitive and Rapid Identification of Pathogens by Droplet Digital PCR in a Cohort of Septic Patients: A Prospective Diagnostic Study. Infectious Diseases, 56(10), 830-841.

      4. Kokkoris, V., et al. (2021). Challenges Using Droplet Digital PCR for Environmental Samples. Applied Microbiology, 1, 74-88.

    • <cite id="u60o2"><nav id="u60o2"></nav></cite>
      
      
    • <samp id="u60o2"><pre id="u60o2"></pre></samp>
    • <tr id="u60o2"></tr>
      <th id="u60o2"></th>
      <td id="u60o2"></td><kbd id="u60o2"><acronym id="u60o2"></acronym></kbd>